Saltar al contenido

Vertebrados · modelo 3D

Nervio y músculo

La orden de mover un músculo pasa por aquí, donde un nervio toca una fibra muscular. El nervio acaba en botones de 1 a 5 micrómetros (milésimas de milímetro): decenas cabrían a lo ancho de un pelo. Las piezas son de varias especies.1, 2, 3

Llega el impulso

El impulso nervioso es una onda eléctrica, aquí ralentizada, que recorre el nervio. La hacen posible canales de sodio, proteínas que dejan pasar sodio cuando cambia el voltaje. El dibujado es humano y abunda en el cerebro; en el nervio motor no se ha comprobado.4, 5

Entra el calcio

En el botón esperan las vesículas, bolsitas de membrana de unos 50 nanómetros (millonésimas de milímetro), unas veinte veces menos que el botón más pequeño. Cerca hay canales de calcio, aquí esquemáticos: con el impulso se abren y entra calcio. Disposición de ratón.2, 6

La vesícula se abre

Las SNARE, proteínas de la vesícula y de la membrana, se enroscan y juntan las dos. Otra proteína, la sinaptotagmina, detecta el calcio. Se abre un poro y sale el mensajero. En la célula todo va mucho más deprisa que aquí. Son de rata.6, 7, 8

El hueco

Entre botón y músculo queda un hueco de 50 a 100 nanómetros, cruzado por una malla de proteínas. La acetilcolina, el mensajero, lo atraviesa casi al instante. El recuadro es de una unión entre neuronas del cerebro de rata, con un hueco más estrecho.1, 3, 9

El receptor se abre

El receptor es un canal de cinco piezas en anillo; muchos se apiñan en las crestas de los pliegues. El dibujado mide unos 14 nanómetros de largo, un cuarto de una vesícula. Con dos acetilcolinas unidas se abre y entran iones. Es de pez torpedo.3, 10, 11

Se apaga

La acetilcolinesterasa, proteína del hueco, corta la acetilcolina; un trozo, la colina, vuelve al botón. En torno a un milisegundo, el receptor del músculo se cierra. La dibujada es de pez torpedo.3, 12

Lo que no se sabe

No se sabe cuántas SNARE hacen falta para abrir una vesícula: los ensayos dan de una a unas diez; las cuatro dibujadas son de diseño. Tampoco está claro si a veces la vesícula solo se entreabre y se recupera casi entera, como la rotulada «kiss-and-run».13, 14, 15, 16

El músculo responde

Con cada impulso se abren unas 20 a 30 vesículas en la unión humana. Al fondo de los pliegues, canales de sodio del músculo, que se abren con el voltaje, arrancan el impulso de la fibra, que se contrae. Su estructura dibujada es humana.1, 17

Vertebrados · modelo 3D

La unión neuromuscular es el punto donde un nervio toca una fibra muscular y le da la orden de contraerse: por ella pasa cada movimiento de brazos y piernas. Allí la señal eléctrica del nervio se convierte en una sustancia química que cruza un hueco diminuto y enciende en el músculo una señal eléctrica nueva.

En una frase

La unión neuromuscular es la sinapsis, el punto de contacto, entre un nervio y una fibra muscular: el final del nervio suelta una sustancia que cruza un hueco diminuto y hace nacer en el músculo un impulso eléctrico propio.

Qué vas a aprender

  • Seguir los dos cambios de la señal, de eléctrica a química y de química a eléctrica, y decir qué provoca cada uno.
  • Explicar qué papel tiene el calcio en la salida del mensajero.
  • Describir cómo abre el receptor un paso en el músculo y para qué sirven los pliegues.
  • Explicar cómo se apaga la señal en torno a un milisegundo.

Cómo funciona

Del receptor al botón del nervio
10 µm1 µm100 nm10 nmBotón más grande5 µmBotón más pequeño1 µmHueco, en su máximo100 nmVesícula50 nmReceptor de acetilcolina14 nm

Receptor de pez torpedo, medido sobre la posición de sus átomos; en otra estructura llega a 16 nm. Vesícula y botón, valores generales de vertebrados. El hueco mide de 50 a 100 nm: se marca el máximo.1, 3, 11

Cada vez que se mueve un brazo o una pierna, la orden llega por un nervio a las fibras musculares, las células largas que forman el músculo. El paso de una a otra ocurre en la unión neuromuscular. Allí la superficie del músculo se hunde en pliegues. Sobre ellos se apoyan los botones, pequeños abultamientos en que termina cada rama del nervio. Botón y músculo no llegan a tocarse: los separa un hueco de 50 a 100 nanómetros, millonésimas de milímetro, ocupado por una malla de proteínas.1

Eléctrica, química y otra vez eléctrica
  1. Voltaje en el nervio El impulso llega al botón como un cambio de voltaje en su membrana.
  2. Calcio en el botón Ese voltaje abre canales y entra calcio; la señal sigue dentro del botón.
  3. Acetilcolina en el hueco Las vesículas se funden y sueltan acetilcolina, que cruza el hueco casi al instante.
  4. Voltaje en las crestas Los receptores se abren, entran iones y cambia el voltaje del músculo.
  5. Impulso del músculo Al fondo de los pliegues, canales de sodio arrancan el impulso de la fibra.

Nada salta el hueco como corriente: el calcio actúa dentro del botón y el impulso del músculo nace en la propia fibra.1, 3, 6

La señal cambia dos veces de forma: llega eléctrica por el nervio, cruza el hueco como sustancia química y vuelve a ser eléctrica en el músculo. Cada cambio tiene su causa: en el botón, el cambio de voltaje deja entrar calcio; en el músculo, la sustancia deja entrar cargas eléctricas.1, 3, 6

El primer cambio empieza en el botón. Dentro hay vesículas, bolsitas de membrana cargadas de acetilcolina, la sustancia mensajera. Miden unos 50 nanómetros: unas veinte en fila cubrirían el botón más pequeño. Con otros métodos salen algo más pequeñas. Algunas vesículas esperan pegadas a la membrana, entre dos bandas de proteínas.

Debajo de esas bandas se ven filas de partículas, y entre ellas hay canales de calcio. Un canal es una proteína con un poro que deja pasar ciertos iones, átomos con carga eléctrica. Cuando el impulso nervioso llega al final del nervio, cambia el voltaje de la membrana del botón. Ese cambio abre los canales y entra calcio.1, 2, 6

El calcio hace que la vesícula se funda con la membrana del botón. En ello trabajan dos clases de proteína. Las SNARE son tiras que salen de las dos membranas y se enroscan unas con otras. Al enroscarse, acercan las membranas hasta que se abre un poro entre ellas. Se parecen a una cremallera que se cierra, aunque la imagen solo vale para ese gesto: no hay dientes, sino cuatro tiras retorcidas en un haz.

La segunda, la sinaptotagmina, está sujeta a la vesícula y es la que detecta el calcio. En neuronas de ratón, si se impide que una de sus partes lo una, la salida rápida desaparece. En sinapsis de mamífero, la salida empieza unos pocos cientos de microsegundos después de entrar el calcio. Por el poro, la acetilcolina pasa al hueco.6, 7, 8

La acetilcolina cruza el hueco casi al instante y llega a los receptores del músculo. Un receptor es una proteína que reconoce una sustancia y responde a ella. Este es además un canal: cinco piezas forman un anillo alrededor de un poro. Para abrirse necesita dos moléculas de acetilcolina. Abierto, deja entrar iones en el músculo, y su carga cambia el voltaje de la membrana. Ahí la señal vuelve a ser eléctrica.3, 18, 19

Vesículas que se abren con cada impulso
Unión humana20–30 vesículas por impulso
Unión de ratón50–100 vesículas por impulso

Recuentos reunidos en una misma revisión, con métodos que no detalla. Las uniones humanas están entre las más pequeñas de los vertebrados estudiados.1

Los pliegues ayudan a que la respuesta prenda. Los receptores se apiñan en las crestas, justo frente a los botones. En el fondo de los pliegues se concentran otros canales, de sodio, que se abren con el voltaje. El cambio que empieza en las crestas baja hasta el fondo, abre esos canales y arranca el impulso del músculo. Se interpreta que esa disposición refuerza la señal.

Ejemplo: en reposo, alguna vesícula se abre sola de vez en cuando, y el voltaje del músculo apenas se mueve. Cuando llega un impulso, en la unión humana se abren a la vez unas 20 a 30. Sus efectos se suman, y el cambio basta para que nazca el impulso del músculo.1

La señal tiene que apagarse para que la siguiente se distinga. De eso se encarga sobre todo la acetilcolinesterasa, una proteína sujeta a la malla del hueco que corta la acetilcolina en dos trozos. Uno de ellos, la colina, vuelve al botón, que la usa para fabricar más mensajero. En torno a un milisegundo, el canal del receptor ya se ha cerrado. Parte de la acetilcolina se ha cortado, el resto se ha alejado, y la poca que queda no basta para mantenerlo abierto.1, 3, 12, 20

Cómo se sabe

Casi todo lo que se sabe de la forma del receptor viene del pez torpedo. Este pez tiene un órgano que da descargas eléctricas, hecho de células que proceden del músculo y llenas de receptores parecidos, aunque no idénticos, a los del músculo humano. Su forma se obtuvo con el microscopio electrónico, que distingue piezas mucho más pequeñas que el de luz. Para verlo abierto, se roció acetilcolina sobre membranas del pez y se congelaron en milisegundos. La forma dibujada es otra: viene de receptores del pez purificados y metidos en discos de lípidos. Su versión con el mensajero unido no consta como abierta, así que la apertura de la escena es una ilustración.3, 10, 18

El orden de bandas y vesículas del botón se midió en ratón y en rana: se cortaron uniones fijadas con sustancias químicas y se fotografiaron desde muchos ángulos para rehacerlas en tres dimensiones. Las filas de canales se vieron rompiendo membranas congeladas. Las SNARE y la sinaptotagmina se estudiaron fuera de la célula: se fabricaron a partir de genes de rata, se cristalizaron y se leyó su forma con rayos X. Cuánta acetilcolina lleva una vesícula se estimó en rana y serpiente, poniendo cantidades conocidas sobre el músculo y midiendo la respuesta.2, 7, 19, 21

Algunos datos proceden de otras sinapsis, las del cerebro, y no se trasladan sin más: allí el hueco es más estrecho y las vesículas, algo más pequeñas.9, 22

Lo que sigue abierto

  • Sólido La orden del nervio pasa al músculo mediante acetilcolina, que abre receptores en las crestas de los pliegues.1, 3
  • Indicios Las bandas de proteínas del botón sujetarían en su sitio los canales de calcio y las vesículas; es la propuesta de quienes las describieron.2, 21
  • Abierto Cuántas SNARE hacen falta para abrir una vesícula no está resuelto: los ensayos con membranas aisladas dan desde una hasta unas diez.13, 14, 15
  • Abierto Se discute si a veces la vesícula solo se entreabre por un poro diminuto y se recupera casi entera, y cuánto pesa esa vía en las sinapsis reales.16, 22
  • Abierto Qué fija el tamaño de cada unión, la distancia entre sus bandas y la forma de los pliegues sigue en gran parte sin explicar.1

Lo que se suele confundir

Se suele pensarLa corriente eléctrica salta del nervio al músculo.

En realidadNo salta. Entre los dos queda un hueco, y lo que lo cruza es una sustancia, la acetilcolina. En el músculo, esa sustancia hace nacer una señal eléctrica nueva.1, 3

Se suele pensarLa acetilcolina se queda en el receptor hasta que llega la orden siguiente.

En realidadUna proteína del hueco la corta enseguida y el resto se dispersa. En torno a un milisegundo el canal se cierra.3, 12

Se suele pensarCada impulso vacía todas las vesículas del botón.

En realidadSolo se abre una parte pequeña de las que esperan pegadas a la membrana. Las demás siguen en su sitio.1, 2

Conceptos clave

Vesícula
Bolsita de membrana del botón del nervio, de unos 50 nanómetros, cargada de acetilcolina.
Acetilcolina
Sustancia mensajera que el nervio suelta en el hueco y que abre los receptores del músculo.
Receptor de acetilcolina
Canal de cinco piezas en las crestas del músculo. Se abre cuando se le unen dos moléculas de acetilcolina.
Acetilcolinesterasa
Proteína sujeta al hueco que corta la acetilcolina y así apaga la señal.

Actividad de repaso

¿Qué hace que la señal eléctrica del nervio se convierta en química?

El cambio de voltaje abre canales de calcio en el botón. El calcio que entra hace que las vesículas se fundan con la membrana y suelten acetilcolina al hueco.

¿Cómo vuelve la señal a ser eléctrica en el músculo?

La acetilcolina abre los receptores, que son canales, y entran iones. El voltaje cambia, baja al fondo de los pliegues, abre allí canales de sodio y nace el impulso del músculo.

¿Qué apaga la señal?

La acetilcolinesterasa corta la acetilcolina en el hueco, y el resto se dispersa. En torno a un milisegundo el receptor se cierra.

¿Por qué se estudia el receptor en un pez?

Porque el órgano eléctrico del pez torpedo procede del músculo y está lleno de receptores parecidos a los humanos, muy apiñados en sus membranas.

Para recordar

  1. En la unión neuromuscular, la señal llega eléctrica por el nervio, cruza el hueco como acetilcolina y vuelve a ser eléctrica en el músculo.
  2. El calcio que entra en el botón hace que las vesículas se abran, y la acetilcolina abre en el músculo canales que cambian su voltaje.
  3. Una proteína del hueco corta la acetilcolina, y en torno a un milisegundo la señal se apaga.

Cómo está hecho este modelo

Cada pieza del modelo se ha contrastado con las fuentes. Aquí constan su valor y lo que se ha simplificado.

PiezaValorSimplificaciónFuente
Tipo de sinapsisUnión neuromuscular de vertebrado: una motoneurona suelta acetilcolina sobre una fibra muscular esqueléticaMezcla de especies, declarada pieza a pieza: zona activa de ratón, placa de humano o mamífero, receptor y enzima de pez torpedo, SNARE y sinaptotagmina de rata, canales de sodio humanos. Lo que es de otra sinapsis va en un recuadro aparte1, 2, 3
Escala1 unidad = 1 nm en todo el modeloLo que se exagera se dice en su fila: el grosor del axón, el tamaño de los puntos de acetilcolina, calcio y sodio, y las moléculas que no constan11
Botones terminalesAbultamientos de 1-5 µm al final de terminales de unos 0,1 µm de grosorCuatro botones de 1,1 a 2 µm, como cúpulas de vidrio de base plana; el principal se dibuja cortado por la mitad1
Ramas entre botonesUnos 0,1 µm de grosorTubos de 110 nm, algo más gruesos para que se vean de lejos1
Axón motorSu grosor antes de ramificarse no consta en las fuentesTubo de diseño de 0,52 µm, sin mielina ni nodos dibujados
Impulso nerviosoViaja por el axón gracias a canales de sodio que se abren por voltaje; su velocidad no consta en las fuentesUna onda de luz que llega a los botones en 4-5 s y se repite cada 6,5 s: muchísimo más lenta que la real4, 5
Vesículas del botónMuchas vesículas de unos 50 nm, agrupadas junto a las zonas activasSe dibujan unas 330 en el botón principal y 160 puntos en cada uno de los otros; un botón real tiene muchas más. De cerca se quitan las que quedan delante de la zona activa, para que no tapen la cámara1
Mitocondrias del botónMuchas mitocondrias dentro del terminalTres cápsulas lisas de 0,6 µm, sin crestas1
Fibra muscularUnos 50 µm de diámetro en humanoSe dibuja un trozo de 18 × 12 µm, plano por arriba: la curvatura no se nota a esta escala. Por dentro, un sólido liso sin miofibrillas1
Pliegues postsinápticosHasta 1 µm de hondo; en humano multiplican la superficie unas 8 vecesCinco pliegues de 800 nm de hondo, solo bajo el botón principal. La separación (400 nm) y la anchura de la boca (70 nm) no constan: son de diseño1
Grosor de las membranasNo consta en las fuentes4 nm en todas, de diseño
Hendidura sináptica50-100 nm entre nervio y músculo50 nm, el mínimo del intervalo, con una regla de 50 nm1
Lámina basalMatriz extracelular que llena la hendiduraRotulada «Malla de proteínas». Malla de diseño en dos capas, con hilos de 1,2 nm cada 13 nm; no entra en los pliegues1
Hendidura de una sinapsis central (recuadro)Unos 26 nm de centro a centro de las membranas en hipocampo de rata en cultivo, por crio-tomografía (Tao); en cortes de hipocampo de rata vitrificados, complejos que la cruzan cada 8,2 nm (Zuber)Recuadro a la misma escala que la escena (se adelanta hacia la cámara y se encoge en la misma proporción), con siete puentes9, 23
Zonas activasUnas 225 por unión de ratón: es una predicción a partir del área de la unión y de la densidad publicada, no un recuento (H72). Separadas unos 0,5 µmSe dibujan seis bajo el botón principal; solo una con detalle1, 2
Bandas densasDos por zona activa, de unos 72 × 27 nm, a 57 nm entre ejes, con material hasta 50-60 nm hacia dentro (ratón)Prismas translúcidos de 72 × 27 × 50 nm, sin los filamentos; perpendiculares al pliegue que tienen debajo. Con estas medidas, las vesículas atracadas entran unos 13 nm en cada prisma: el material real es un entramado de filamentos que llega hasta ellas, no un bloque2, 21
Canales de calcioPartículas de 10-12 nm en dobles filas de unos 80 nm bajo cada banda (ratón): cada 17-19 nm a lo largo de la fila y unos 19 nm entre las dos filasEsquemáticos: cuatro cilindros alrededor de un poro, de 11 nm, cinco por fila cada 18 nm; las dos filas de cada pareja, a 19 nm. No hay estructura atómica leída del canal presináptico, y no consta qué fracción de las partículas son canales de calcio: aquí todas lo son2, 6
CalcioEntra por los canales, que suelen quedar a menos de 100 nm de las vesículas atracadasPuntos de 2,6 nm (un ion mide mucho menos) que se alejan hasta 92 nm y se apagan2, 6
Vesícula sináptica55,6 ± 3,3 nm de diámetro externo en la unión de ratón. Otras fuentes dan 41 nm (hipocampo, congelación a alta presión) y 25-60 nm (crio-tomografía): la medida depende del tipo de sinapsis y del métodoTodas de 55,6 nm. Sin proteínas en la superficie: su número no consta en lo leído2, 9, 22
Vesículas atracadasDos entre las bandas, con un contacto de unos 395 nm², y alguna más en los extremosDos entre las bandas (una se fusiona del todo y la otra hace «kiss-and-run») y una en un extremo que solo está pegada: en ratón, las de los extremos se pegan donde no se ha visto fusión. Antes de fusionarse, su membrana toca la del botón (4 nm entre los centros de las dos membranas); al cerrarse las SNARE baja 1,5 nm y queda un cuello de 2,5 nm hasta el poro, de diseño. El contacto no se dibuja como superficie2
Fusión completaSe abre un poro y la vesícula se aplana en la membrana en menos de 30 ms (hipocampo de ratón); la liberación arranca en unos cientos de microsegundosForma de diseño: un casquete que se aplana conservando su área. En la parada de la fusión se repite en unos 11 s y solo llega a abrir el poro y empezar a aplanarse; aplanada se ve en las paradas siguientes, cortada, como un hueco abierto a la hendidura. Muchísimo más lento que el real6, 22
«Kiss-and-run»Poro de nanómetros; la vesícula se recupera casi intacta. Su peso real en las sinapsis se discuteLo hace la segunda vesícula atracada entre las bandas: poro de 2,6 nm que se abre y se cierra; sale algo más de la cuarta parte de la acetilcolina dibujada, cifra de diseño16, 22
Complejo SNAREHaz de cuatro hélices de unos 12 × 3 nm: sinaptobrevina-2 (vesícula), sintaxina-1A y dos de SNAP-25 (membrana). Coordenadas de 1SFC (rata, rayos X 2,4 Å)Tubos por los carbonos alfa, en rosa, azul y verde, a unos 21 nm del contacto, en el hueco entre la vesícula y la membrana del botón, inclinados hacia el contacto y abiertos hacia los extremos de las bandas, donde no hay canales de calcio debajo. Las hélices que cruzan las membranas no se dibujan: unos enlaces esquemáticos llevan la sinaptobrevina a la vesícula y la sintaxina a la membrana. La cremallera se muestra separando las puntas que faltan por cerrar, sin forma medida7, 11
SNARE por vesículaNo resuelto: los ensayos con vesículas aisladas dan de uno a unos diezSe dibujan cuatro en anillo, número de diseño6, 13, 14, 15
Sinaptotagmina-1Dominios C2A y C2B que unen calcio; el C2B se pega al haz SNARE por una gran interfaz. Coordenadas de 5CCG (rata, 3,5 Å)Una sola, en uno de los cuatro complejos, con los cinco iones de calcio de la estructura que se le unen; sin la hélice que la ancla a la vesícula8, 11
AcetilcolinaMolécula de 146 Da; menos de 10 000 por vesículaEn nubes, 220 puntos por vesícula y 1400 en la hendidura, de 1,5-1,8 nm. En primer plano, bolas y varillas con la geometría ideal de ACH, que mide menos de 1 nm3, 19
Difusión de la acetilcolinaCruza la hendidura casi al instante; en torno a un milisegundo, hidrólisis y difusión la bajan lo bastanteLa nube tarda unos 9 s en repartirse y apagarse3, 19
Receptor de acetilcolinaPentámero α, β, α, γ, δ de unos 16 × 8 nm, casi perpendicular a la membrana. Coordenadas de 7QKO (torpedo en nanodisco, reposo, 2,9 Å); en las coordenadas dibujadas mide unos 14 nm de largo y 8,6 de anchoUna cuenta por aminoácido, coloreada por subunidad, con las dos α del mismo tono. La parte que mira a la cámara se abre por corte para ver el poro3, 10, 11, 18
Apertura del receptorCon dos acetilcolinas abre en microsegundos y queda abierto en torno a 1 msInterpolación lineal de 7QKO a 7QL6 (con carbamilcolina), superpuestas con 0,13 nm de desviación cuadrática media (desplazamiento medio 0,09 nm, máximo 1 nm), así que el cambio apenas se ve. Es una ilustración, no la trayectoria real, y 7QL6 no está asignada a abierto o desensibilizado. Ciclo de unos 7 s: se unen las dos acetilcolinas, cambia la forma, entra sodio, se sueltan y el receptor vuelve al reposo1, 3, 10, 11
Sitios de uniónDos, unos 4 nm sobre la membrana, junto a γ y δAcetilcolina puesta donde está la carbamilcolina en 7QL6, con un giro de diseño; en estas coordenadas quedan a unos 3 nm sobre la superficie de la membrana dibujada3, 11, 18
Sodio por el receptorUnos 20 000 iones por milisegundo por canal abierto26 esferas de sodio en bucle, que bajan por el poro y salen por las ventanas laterales; número y ritmo de diseño3
Densidad de receptoresUnos 10 000 por µm² en la crestaRed hexagonal cada 10,5 nm en dos franjas de la cresta junto al pliegue central (unos 1300); solo en las crestas, no en la parte alta de las paredes. Los vecinos se dibujan simplificados: doce en bloques de 100 piezas y el resto con una elipse por subunidad1, 3
Canal de sodio del axón (Nav1.6)Nav1.6 humano con β1, inactivado, de unos 14 × 11 × 10 nm (8FHD). En motoneuronas no se ha comprobado qué subtipo dominaUna cuenta por aminoácido; los sensores de voltaje, rotulados «Sensor del voltaje» (en amarillo), son las cuentas de la membrana a más de 3,4 nm del eje, un criterio geométrico. Se pone en el axón cerca del botón, no en el segmento inicial; cuatro vecinos en bloques. Densidad: no consta. La subunidad β1, en ocre, se rotula «Pieza auxiliar». En el dibujo se rotula «Canal de sodio»4, 11
Apertura del Nav1.6No hay estructura abierta en lo leído: 8FHD es inactivadaSolo un brillo en el poro al pasar la onda; la forma no cambia4
Canales de sodio del músculo (Nav1.4)Se concentran en el fondo de los pliegues; estructura humana con β1 (6AGF)Bloques de 26 piezas sacados de 6AGF, cada 40 nm en el fondo de los tres pliegues centrales; densidad no consta. De lejos, un destello en el fondo de esos tres pliegues1, 11, 17
Onda en los plieguesLa corriente de los receptores despolariza los pliegues y abre los canales de sodio del fondoUna banda de luz que baja de la cresta al fondo en unos 2 a 4,5 s, según la parada1
AcetilcolinesterasaMonómero de unos 7 × 7 × 5 nm con una garganta de 0,5 nm de ancho y 2 nm de hondo (1EA5, torpedo, 1,8 Å); anclada a la lámina basalUna sola, entre las dos capas de la malla, sin la cola de colágeno; densidad no consta. La mitad que mira a la cámara se abre por corte para ver la garganta. La garganta se rotula «Entrada de la enzima»1, 11, 12, 20
HidrólisisLa enzima corta la acetilcolina en colina y acetato; la colina vuelve al terminalLa molécula se parte por el enlace éster; los fragmentos se alejan por caminos de diseño, en unos 8 s1, 12
RitmoTodo el relevo, del calcio al cierre del canal, cabe en una fracción de milisegundo a unos pocos milisegundosCada paso dura varios segundos en el dibujo: es una cámara lenta. Con movimiento reducido no se anima nada y cada parada muestra un momento fijo3, 6, 24
Tipo de sinapsis
Valor
Unión neuromuscular de vertebrado: una motoneurona suelta acetilcolina sobre una fibra muscular esquelética1, 2, 3
Simplificación
Mezcla de especies, declarada pieza a pieza: zona activa de ratón, placa de humano o mamífero, receptor y enzima de pez torpedo, SNARE y sinaptotagmina de rata, canales de sodio humanos. Lo que es de otra sinapsis va en un recuadro aparte
Escala
Valor
1 unidad = 1 nm en todo el modelo11
Simplificación
Lo que se exagera se dice en su fila: el grosor del axón, el tamaño de los puntos de acetilcolina, calcio y sodio, y las moléculas que no constan
Botones terminales
Valor
Abultamientos de 1-5 µm al final de terminales de unos 0,1 µm de grosor1
Simplificación
Cuatro botones de 1,1 a 2 µm, como cúpulas de vidrio de base plana; el principal se dibuja cortado por la mitad
Ramas entre botones
Valor
Unos 0,1 µm de grosor1
Simplificación
Tubos de 110 nm, algo más gruesos para que se vean de lejos
Axón motor
Valor
Su grosor antes de ramificarse no consta en las fuentes
Simplificación
Tubo de diseño de 0,52 µm, sin mielina ni nodos dibujados
Impulso nervioso
Valor
Viaja por el axón gracias a canales de sodio que se abren por voltaje; su velocidad no consta en las fuentes4, 5
Simplificación
Una onda de luz que llega a los botones en 4-5 s y se repite cada 6,5 s: muchísimo más lenta que la real
Vesículas del botón
Valor
Muchas vesículas de unos 50 nm, agrupadas junto a las zonas activas1
Simplificación
Se dibujan unas 330 en el botón principal y 160 puntos en cada uno de los otros; un botón real tiene muchas más. De cerca se quitan las que quedan delante de la zona activa, para que no tapen la cámara
Mitocondrias del botón
Valor
Muchas mitocondrias dentro del terminal1
Simplificación
Tres cápsulas lisas de 0,6 µm, sin crestas
Fibra muscular
Valor
Unos 50 µm de diámetro en humano1
Simplificación
Se dibuja un trozo de 18 × 12 µm, plano por arriba: la curvatura no se nota a esta escala. Por dentro, un sólido liso sin miofibrillas
Pliegues postsinápticos
Valor
Hasta 1 µm de hondo; en humano multiplican la superficie unas 8 veces1
Simplificación
Cinco pliegues de 800 nm de hondo, solo bajo el botón principal. La separación (400 nm) y la anchura de la boca (70 nm) no constan: son de diseño
Grosor de las membranas
Valor
No consta en las fuentes
Simplificación
4 nm en todas, de diseño
Hendidura sináptica
Valor
50-100 nm entre nervio y músculo1
Simplificación
50 nm, el mínimo del intervalo, con una regla de 50 nm
Lámina basal
Valor
Matriz extracelular que llena la hendidura1
Simplificación
Rotulada «Malla de proteínas». Malla de diseño en dos capas, con hilos de 1,2 nm cada 13 nm; no entra en los pliegues
Hendidura de una sinapsis central (recuadro)
Valor
Unos 26 nm de centro a centro de las membranas en hipocampo de rata en cultivo, por crio-tomografía (Tao); en cortes de hipocampo de rata vitrificados, complejos que la cruzan cada 8,2 nm (Zuber)9, 23
Simplificación
Recuadro a la misma escala que la escena (se adelanta hacia la cámara y se encoge en la misma proporción), con siete puentes
Zonas activas
Valor
Unas 225 por unión de ratón: es una predicción a partir del área de la unión y de la densidad publicada, no un recuento (H72). Separadas unos 0,5 µm1, 2
Simplificación
Se dibujan seis bajo el botón principal; solo una con detalle
Bandas densas
Valor
Dos por zona activa, de unos 72 × 27 nm, a 57 nm entre ejes, con material hasta 50-60 nm hacia dentro (ratón)2, 21
Simplificación
Prismas translúcidos de 72 × 27 × 50 nm, sin los filamentos; perpendiculares al pliegue que tienen debajo. Con estas medidas, las vesículas atracadas entran unos 13 nm en cada prisma: el material real es un entramado de filamentos que llega hasta ellas, no un bloque
Canales de calcio
Valor
Partículas de 10-12 nm en dobles filas de unos 80 nm bajo cada banda (ratón): cada 17-19 nm a lo largo de la fila y unos 19 nm entre las dos filas2, 6
Simplificación
Esquemáticos: cuatro cilindros alrededor de un poro, de 11 nm, cinco por fila cada 18 nm; las dos filas de cada pareja, a 19 nm. No hay estructura atómica leída del canal presináptico, y no consta qué fracción de las partículas son canales de calcio: aquí todas lo son
Calcio
Valor
Entra por los canales, que suelen quedar a menos de 100 nm de las vesículas atracadas2, 6
Simplificación
Puntos de 2,6 nm (un ion mide mucho menos) que se alejan hasta 92 nm y se apagan
Vesícula sináptica
Valor
55,6 ± 3,3 nm de diámetro externo en la unión de ratón. Otras fuentes dan 41 nm (hipocampo, congelación a alta presión) y 25-60 nm (crio-tomografía): la medida depende del tipo de sinapsis y del método2, 9, 22
Simplificación
Todas de 55,6 nm. Sin proteínas en la superficie: su número no consta en lo leído
Vesículas atracadas
Valor
Dos entre las bandas, con un contacto de unos 395 nm², y alguna más en los extremos2
Simplificación
Dos entre las bandas (una se fusiona del todo y la otra hace «kiss-and-run») y una en un extremo que solo está pegada: en ratón, las de los extremos se pegan donde no se ha visto fusión. Antes de fusionarse, su membrana toca la del botón (4 nm entre los centros de las dos membranas); al cerrarse las SNARE baja 1,5 nm y queda un cuello de 2,5 nm hasta el poro, de diseño. El contacto no se dibuja como superficie
Fusión completa
Valor
Se abre un poro y la vesícula se aplana en la membrana en menos de 30 ms (hipocampo de ratón); la liberación arranca en unos cientos de microsegundos6, 22
Simplificación
Forma de diseño: un casquete que se aplana conservando su área. En la parada de la fusión se repite en unos 11 s y solo llega a abrir el poro y empezar a aplanarse; aplanada se ve en las paradas siguientes, cortada, como un hueco abierto a la hendidura. Muchísimo más lento que el real
«Kiss-and-run»
Valor
Poro de nanómetros; la vesícula se recupera casi intacta. Su peso real en las sinapsis se discute16, 22
Simplificación
Lo hace la segunda vesícula atracada entre las bandas: poro de 2,6 nm que se abre y se cierra; sale algo más de la cuarta parte de la acetilcolina dibujada, cifra de diseño
Complejo SNARE
Valor
Haz de cuatro hélices de unos 12 × 3 nm: sinaptobrevina-2 (vesícula), sintaxina-1A y dos de SNAP-25 (membrana). Coordenadas de 1SFC (rata, rayos X 2,4 Å)7, 11
Simplificación
Tubos por los carbonos alfa, en rosa, azul y verde, a unos 21 nm del contacto, en el hueco entre la vesícula y la membrana del botón, inclinados hacia el contacto y abiertos hacia los extremos de las bandas, donde no hay canales de calcio debajo. Las hélices que cruzan las membranas no se dibujan: unos enlaces esquemáticos llevan la sinaptobrevina a la vesícula y la sintaxina a la membrana. La cremallera se muestra separando las puntas que faltan por cerrar, sin forma medida
SNARE por vesícula
Valor
No resuelto: los ensayos con vesículas aisladas dan de uno a unos diez6, 13, 14, 15
Simplificación
Se dibujan cuatro en anillo, número de diseño
Sinaptotagmina-1
Valor
Dominios C2A y C2B que unen calcio; el C2B se pega al haz SNARE por una gran interfaz. Coordenadas de 5CCG (rata, 3,5 Å)8, 11
Simplificación
Una sola, en uno de los cuatro complejos, con los cinco iones de calcio de la estructura que se le unen; sin la hélice que la ancla a la vesícula
Acetilcolina
Valor
Molécula de 146 Da; menos de 10 000 por vesícula3, 19
Simplificación
En nubes, 220 puntos por vesícula y 1400 en la hendidura, de 1,5-1,8 nm. En primer plano, bolas y varillas con la geometría ideal de ACH, que mide menos de 1 nm
Difusión de la acetilcolina
Valor
Cruza la hendidura casi al instante; en torno a un milisegundo, hidrólisis y difusión la bajan lo bastante3, 19
Simplificación
La nube tarda unos 9 s en repartirse y apagarse
Receptor de acetilcolina
Valor
Pentámero α, β, α, γ, δ de unos 16 × 8 nm, casi perpendicular a la membrana. Coordenadas de 7QKO (torpedo en nanodisco, reposo, 2,9 Å); en las coordenadas dibujadas mide unos 14 nm de largo y 8,6 de ancho3, 10, 11, 18
Simplificación
Una cuenta por aminoácido, coloreada por subunidad, con las dos α del mismo tono. La parte que mira a la cámara se abre por corte para ver el poro
Apertura del receptor
Valor
Con dos acetilcolinas abre en microsegundos y queda abierto en torno a 1 ms1, 3, 10, 11
Simplificación
Interpolación lineal de 7QKO a 7QL6 (con carbamilcolina), superpuestas con 0,13 nm de desviación cuadrática media (desplazamiento medio 0,09 nm, máximo 1 nm), así que el cambio apenas se ve. Es una ilustración, no la trayectoria real, y 7QL6 no está asignada a abierto o desensibilizado. Ciclo de unos 7 s: se unen las dos acetilcolinas, cambia la forma, entra sodio, se sueltan y el receptor vuelve al reposo
Sitios de unión
Valor
Dos, unos 4 nm sobre la membrana, junto a γ y δ3, 11, 18
Simplificación
Acetilcolina puesta donde está la carbamilcolina en 7QL6, con un giro de diseño; en estas coordenadas quedan a unos 3 nm sobre la superficie de la membrana dibujada
Sodio por el receptor
Valor
Unos 20 000 iones por milisegundo por canal abierto3
Simplificación
26 esferas de sodio en bucle, que bajan por el poro y salen por las ventanas laterales; número y ritmo de diseño
Densidad de receptores
Valor
Unos 10 000 por µm² en la cresta1, 3
Simplificación
Red hexagonal cada 10,5 nm en dos franjas de la cresta junto al pliegue central (unos 1300); solo en las crestas, no en la parte alta de las paredes. Los vecinos se dibujan simplificados: doce en bloques de 100 piezas y el resto con una elipse por subunidad
Canal de sodio del axón (Nav1.6)
Valor
Nav1.6 humano con β1, inactivado, de unos 14 × 11 × 10 nm (8FHD). En motoneuronas no se ha comprobado qué subtipo domina4, 11
Simplificación
Una cuenta por aminoácido; los sensores de voltaje, rotulados «Sensor del voltaje» (en amarillo), son las cuentas de la membrana a más de 3,4 nm del eje, un criterio geométrico. Se pone en el axón cerca del botón, no en el segmento inicial; cuatro vecinos en bloques. Densidad: no consta. La subunidad β1, en ocre, se rotula «Pieza auxiliar». En el dibujo se rotula «Canal de sodio»
Apertura del Nav1.6
Valor
No hay estructura abierta en lo leído: 8FHD es inactivada4
Simplificación
Solo un brillo en el poro al pasar la onda; la forma no cambia
Canales de sodio del músculo (Nav1.4)
Valor
Se concentran en el fondo de los pliegues; estructura humana con β1 (6AGF)1, 11, 17
Simplificación
Bloques de 26 piezas sacados de 6AGF, cada 40 nm en el fondo de los tres pliegues centrales; densidad no consta. De lejos, un destello en el fondo de esos tres pliegues
Onda en los pliegues
Valor
La corriente de los receptores despolariza los pliegues y abre los canales de sodio del fondo1
Simplificación
Una banda de luz que baja de la cresta al fondo en unos 2 a 4,5 s, según la parada
Acetilcolinesterasa
Valor
Monómero de unos 7 × 7 × 5 nm con una garganta de 0,5 nm de ancho y 2 nm de hondo (1EA5, torpedo, 1,8 Å); anclada a la lámina basal1, 11, 12, 20
Simplificación
Una sola, entre las dos capas de la malla, sin la cola de colágeno; densidad no consta. La mitad que mira a la cámara se abre por corte para ver la garganta. La garganta se rotula «Entrada de la enzima»
Hidrólisis
Valor
La enzima corta la acetilcolina en colina y acetato; la colina vuelve al terminal1, 12
Simplificación
La molécula se parte por el enlace éster; los fragmentos se alejan por caminos de diseño, en unos 8 s
Ritmo
Valor
Todo el relevo, del calcio al cierre del canal, cabe en una fracción de milisegundo a unos pocos milisegundos3, 6, 24
Simplificación
Cada paso dura varios segundos en el dibujo: es una cámara lenta. Con movimiento reducido no se anima nada y cada parada muestra un momento fijo

Referencias

  1. Slater CR (2017). The Structure of Human Neuromuscular Junctions: Some Unanswered Molecular Questions. Int J Mol Sci. doi:10.3390/ijms18102183
  2. Nagwaney S, Harlow ML et al. (2009). Macromolecular connections of active zone material to docked synaptic vesicles and presynaptic membrane at neuromuscular junctions of mouse. J Comp Neurol. doi:10.1002/cne.21975
  3. Unwin N (2013). Nicotinic acetylcholine receptor and the structural basis of neuromuscular transmission: insights from Torpedo postsynaptic membranes. Q Rev Biophys. doi:10.1017/S0033583513000061
  4. Fan X, Huang J, Jin X, Yan N (2023). Cryo-EM structure of human voltage-gated sodium channel Nav1.6. Proc Natl Acad Sci U S A. doi:10.1073/pnas.2220578120
  5. Catterall WA (2012). Voltage-gated sodium channels at 60: structure, function and pathophysiology. J Physiol. doi:10.1113/jphysiol.2011.224204 (leído por el resumen)
  6. Südhof TC (2013). Neurotransmitter release: the last millisecond in the life of a synaptic vesicle. Neuron. doi:10.1016/j.neuron.2013.10.022
  7. Sutton RB, Fasshauer D, Jahn R, Brunger AT (1998). Crystal structure of a SNARE complex involved in synaptic exocytosis at 2.4 A resolution. Nature. doi:10.1038/26412 (leído por el resumen)
  8. Zhou Q et al. (2015). Architecture of the synaptotagmin-SNARE machinery for neuronal exocytosis. Nature. doi:10.1038/nature14975
  9. Tao CL et al. (2018). Differentiation and Characterization of Excitatory and Inhibitory Synapses by Cryo-electron Tomography and Correlative Microscopy. J Neurosci. doi:10.1523/JNEUROSCI.1548-17.2017
  10. Zarkadas E et al. (2022). Conformational transitions and ligand-binding to a muscle-type nicotinic acetylcholine receptor. Neuron. doi:10.1016/j.neuron.2022.01.013 (leído por el resumen)
  11. Berman HM et al. (2000). The Protein Data Bank. Nucleic Acids Res. doi:10.1093/nar/28.1.235 (leído por el resumen)
  12. Xu Y, Cheng S, Sussman JL, Silman I, Jiang H (2017). Computational Studies on Acetylcholinesterases. Molecules. doi:10.3390/molecules22081324
  13. Domanska MK et al. (2009). Single vesicle millisecond fusion kinetics reveals number of SNARE complexes optimal for fast SNARE-mediated membrane fusion. J Biol Chem. doi:10.1074/jbc.M109.047381 (leído por el resumen)
  14. Karatekin E et al. (2010). A fast, single-vesicle fusion assay mimics physiological SNARE requirements. Proc Natl Acad Sci U S A. doi:10.1073/pnas.0914723107 (leído por el resumen)
  15. Heo P et al. (2021). Nascent fusion pore opening monitored at single-SNAREpin resolution. Proc Natl Acad Sci U S A. doi:10.1073/pnas.2024922118 (leído por el resumen)
  16. Alabi AA, Tsien RW (2013). Perspectives on kiss-and-run: role in exocytosis, endocytosis, and neurotransmission. Annu Rev Physiol. doi:10.1146/annurev-physiol-020911-153305 (leído por el resumen)
  17. Pan X et al. (2018). Structure of the human voltage-gated sodium channel Nav1.4 in complex with β1. Science. doi:10.1126/science.aau2486 (leído por el resumen)
  18. Unwin N (2005). Refined structure of the nicotinic acetylcholine receptor at 4A resolution. J Mol Biol. doi:10.1016/j.jmb.2004.12.031 (leído por el resumen)
  19. Kuffler SW, Yoshikami D (1975). The number of transmitter molecules in a quantum: an estimate from iontophoretic application of acetylcholine at the neuromuscular synapse. J Physiol. doi:10.1113/jphysiol.1975.sp011103 (leído por el resumen)
  20. Sussman JL et al. (1991). Atomic structure of acetylcholinesterase from Torpedo californica: a prototypic acetylcholine-binding protein. Science. doi:10.1126/science.1678899 (leído por el resumen)
  21. Harlow ML et al. (2001). The architecture of active zone material at the frog's neuromuscular junction. Nature. doi:10.1038/35054000 (leído por el resumen)
  22. Watanabe S et al. (2013). Ultrafast endocytosis at mouse hippocampal synapses. Nature. doi:10.1038/nature12809
  23. Zuber B et al. (2005). The mammalian central nervous synaptic cleft contains a high density of periodically organized complexes. Proc Natl Acad Sci U S A. doi:10.1073/pnas.0509527102 (leído por el resumen)
  24. Sabatini BL, Regehr WG (1996). Timing of neurotransmission at fast synapses in the mammalian brain. Nature. doi:10.1038/384170a0 (leído por el resumen)

Esquema, no fotografía. Contrastado con las fuentes citadas. Versión 1.0, 06-11-2026.

La sinapsis entre nervio y músculo