Cómo responde una planta al ataque de un insecto: lo medido en horas y días
Lo más medido es que la hormona de defensa jasmonato se activa tras el ataque de un insecto o un estímulo que lo imita. Que la defensa dependa de ella, que la respuesta cambie con el insecto y que una herida envíe un aviso rápido son indicios. Qué molécula del insecto reconoce la planta sigue sin identificarse.
Una oruga mastica una hoja. Un pulgón la pincha. Un escarabajo perfora la corteza. La planta no puede apartarse, pero en las horas siguientes cambia por dentro.
Lo que más equipos han medido es que se activa la vía del jasmonato, una hormona vegetal de defensa. Se ha visto en té, arroz, abeto rojo y arabidopsis, una pequeña planta de laboratorio. Hay indicios de que la defensa depende de esa hormona y de que la respuesta cambia con el insecto. También de que una herida envía un aviso rápido a otras partes de la planta. Qué molécula del insecto reconoce la planta sigue sin identificarse.
Lo medido recuerda a un barco con una vía de agua. Primero corre el aviso, después se organiza la tripulación y más tarde se refuerza el casco. Cada tramo, eso sí, se midió en una planta distinta.
Ficha de la revisión
- Pregunta
- ¿Cómo responde una planta cuando un insecto se la come? Qué se ha medido en las primeras horas y días.
- Qué se ha leído
- 8 estudios: 5 completos y 3 por su resumen
- Organismos
- Arroz, té, abeto rojo, arabidopsis y una hierba invasora; como atacantes, orugas, un pulgón, la chicharrita parda y un escarabajo barrenador. En abeto se aplicaron proteínas de escarabajo descortezador, y en un estudio con arabidopsis, heridas sin insecto.
- Periodo
- 2026
- Cómo se eligieron
- Búsqueda en PubMed por título y resumen: estudios con datos propios que contestan la pregunta, sin revisiones ni estudios clínicos.
- Tipo
- Revisión narrativa. No es sistemática: no agota lo publicado ni combina resultados.
Lo que se puede afirmar hoy
- Sólido
1. Tras el ataque de un insecto, una herida o proteínas de insecto aplicadas, se activa la vía del jasmonato: sube la hormona o se encienden sus genes.
Lo miden cuatro equipos independientes leídos completos y dos resúmenes: la hormona en té y en arroz con un gen aumentado, sus genes en abeto y un marcador en raíces de arabidopsis; ningún estudio leído lo contradice. Insecto real, solo en té y arroz. Estudios 2, 3, 4, 6, 5, 8
- Indicios
2. La planta depende del jasmonato para defenderse del insecto, en arroz frente a la chicharrita parda y en arabidopsis frente a una oruga.
Ningún estudio leído completo usa plantas incapaces de fabricar o percibir jasmonato; lo sugieren tres resúmenes, y el estudio completo de arroz ofrece datos genéticos y de correlación. Estudios 4, 5, 7, 8
- Indicios
3. La respuesta de la planta cambia según el insecto: en una hierba invasora, el pulgón del caupí alteró más genes que la oruga gusano del tabaco.
Un solo equipo y dos especies que difieren a la vez en el modo de comer y en la variedad de plantas que atacan; un único momento, a los dos días, y sin grupo de daño mecánico. Estudios 1
- Indicios
4. En arabidopsis, una herida dispara una señal eléctrica y de calcio que alcanza otras partes de la planta.
Una sola especie de laboratorio: la señal eléctrica y el calcio entre raíces los mide un equipo, con heridas de capilar y sin insecto; el calcio hacia hojas lejanas procede de otro, leído por su resumen. Estudios 6, 8
- Indicios
5. En la raíz de arabidopsis, un canal sensible a la presión, MCA1, contribuye a pasar la señal de una herida a las raíces vecinas.
Un solo estudio, en una especie y con heridas mecánicas; sin el canal queda más de un tercio de la señal, y que descifre una caída de presión es la propuesta de los autores. Estudios 6
- Abierto
6. Qué molécula concreta del insecto reconoce la planta.
En abeto, el extracto de escarabajo añadió una respuesta a la del frotado, pero contenía más de mil proteínas y ningún estudio leído identifica la responsable. Estudios 3
Sólido: lo miden al menos tres equipos independientes, con al menos dos estudios leídos completos, y ningún estudio leído lo contradice. Indicios: lo sostienen uno o dos equipos, o se vio en un solo organismo, tarea o lugar, o los autores reconocen un reparo de método. Abierto: los estudios leídos no coinciden, o ninguno lo ha puesto a prueba.
En segundos: un aviso eléctrico entre raíces, visto en arabidopsis y sin insecto
En plántulas de arabidopsis, un equipo pinchó una raíz lateral con un capilar de vidrio y registró la raíz de al lado6. La raíz sana cambió su carga eléctrica casi al instante6. Esa pérdida brusca de la carga de la membrana se llama despolarización.
En el punto herido subía también el calcio, pero su onda avanzaba unas diez mil veces más despacio6.
Para explicar tanta rapidez, los autores proponen que viaja una caída de presión. Al pinchar una raíz, las células de la vecina perdieron presión de turgencia, la presión del agua que las mantiene hinchadas6. Según esa propuesta, la recoge MCA1, un canal mecanosensible: un poro de la membrana que se abre con los cambios de presión. Las plantas sin él pasaron a la raíz vecina menos de la mitad de la señal6. Los autores proponen además que otros poros, los receptores de glutamato, la amplifican después; sin ellos, el calcio a distancia cayó mucho6.
Cinco horas después, las raíces vecinas habían encendido un marcador de la vía del jasmonato6. Otro trabajo, conocido por su resumen, describe en hojas de arabidopsis un canal de calcio necesario para que la señal alcance hojas lejanas8.
El jasmonato se activa: visto en té, arroz y abeto, con medidas distintas
En un campo de té, las raíces de plantas infestadas por un escarabajo barrenador tenían casi el triple de jasmonato que las sanas2.
En arroz de invernadero, el atacante fue la chicharrita parda, que chupa la savia. Un gen de la planta, OsJAC1, se activó con ella y con un derivado del jasmonato4. En plantas con ese gen aumentado, el jasmonato subió tras el ataque más que en las normales, y las crías ganaron menos peso4. En las plantas sin el gen, las crías ganaron más peso y, a la semana, la planta estaba marchita4.
Otro trabajo con arroz y la misma chicharrita describe, según su resumen, una proteína reguladora que refuerza la síntesis de jasmonato5. Un tercero, también por su resumen, vincula el jasmonato con más lignina, el material que endurece la pared de las células7.
En abeto rojo no hubo insecto vivo: se frotó el tallo de plántulas con proteínas extraídas de escarabajos descortezadores3. A las dos horas se habían encendido genes de percepción y de señales, entre ellos los que fabrican jasmonato3. A los dos días quedaban muchos menos genes alterados, sobre todo genes de proteínas de defensa3. El grupo de comparación recibió el mismo frotado sin proteínas: lo medido es lo que estas añaden a una herida leve3.
A los dos días: en un estudio, una hierba respondió distinto a una oruga y a un pulgón
Una hierba invasora, pariente del tomate, pasó dos días con la oruga llamada gusano del tabaco o con el pulgón del caupí1. Frente a plantas sin insecto, el pulgón cambió la actividad de más del triple de genes que la oruga1. Con el pulgón destacaron genes de regulación y de señales; con la oruga, genes de la pared de las células1.
Los dos insectos difieren en varias cosas a la vez. Uno mastica y el otro chupa; la oruga come pocas especies de plantas y el pulgón, muchas1. Tampoco hubo un grupo con daño mecánico solo1. Con ese diseño no se sabe cuál de esas diferencias explica el resultado.
Dónde coinciden y dónde no
Cuatro trabajos de equipos distintos vieron activarse la vía del jasmonato. Dos midieron la hormona, en té2 y en arroz con un gen aumentado4. Otro midió sus genes en abeto3, y otro, un marcador en raíces de arabidopsis6.
Ningún estudio leído completo usó plantas incapaces de fabricar jasmonato. Que la defensa dependa de él queda sin comprobar en ellos. El trabajo del arroz describe sus propias pruebas como genéticas y de correlación4.
El trabajo del té es una observación de campo, con infestación natural y cinco plantas por grupo2. Sanas e infestadas crecían en subparcelas separadas, y parte de la diferencia puede venir del sitio. El extracto del abeto salía de escarabajos enteros, con proteínas internas que la planta no encontraría al comienzo de un ataque real3. En las hojas del abeto apenas hubo cambios, lo que apunta a una respuesta local3.
El aviso eléctrico se vio en raíces pinchadas, y el mismo estudio subraya que raíz y tallo responden de forma distinta a una herida6.
El laboratorio se comparó con el bosque solo en abeto, con datos anteriores del mismo equipo: coincidía cerca de un tercio de los genes3.
Lo que falta por medir
En los estudios leídos, ninguno identifica qué molécula del insecto reconoce la planta. El extracto de escarabajo contenía más de mil proteínas distintas3.
Falta comprobar si la mordedura de un insecto provoca en la raíz el mismo aviso que un pinchazo6. Y falta seguir la secuencia entera en una misma planta con un mismo insecto.
En la hierba invasora haría falta un grupo con daño mecánico, más momentos de muestreo y medir proteínas además de genes1. En arroz queda por medir el jasmonato en las plantas sin OsJAC14.
Cifras
- Arabidopsis, herida de una célula de la raíz: despolarización de 49,4 mV6.
- Señal en la raíz vecina: 38,2 % de la normal sin MCA1 y 92,1 % sin OSCA1, otro canal6.
- Arabidopsis: señal eléctrica, 74,7 mm/s; onda de calcio junto a la herida, 2,59 × 10⁻³ mm/s6.
- Té, jasmonato en raíz: 0,49 ng/g en plantas sanas y 1,35 en infestadas2.
- Abeto rojo: 488 genes alterados a las 2 h y 84 a las 48 h; un 30 % compartido con árboles adultos; 1.582 proteínas en el extracto3.
- Hierba invasora, a las 48 h: 14.799 genes alterados con pulgón y 4.235 con oruga1.
Los estudios
Qué hizo y qué vio cada estudio
| N.º | Estudio | Animales | Qué hicieron | Qué vieron | Leído |
|---|---|---|---|---|---|
| 1 | Karrem y otros, 2026 Physiologia Plantarum | AnimalesHierba invasora Solanum elaeagnifolium, hojas; oruga Manduca sexta (mastica, especialista) y pulgón Aphis craccivora (chupa, generalista) | Qué hicieronMidieron la actividad de los genes tras 48 h con oruga o con pulgón | Qué vieron14.799 genes alterados con pulgón y 4.235 con oruga, frente a plantas sin insecto. 3 réplicas por grupo, de 3 a 5 plantas. Un solo momento; sin grupo de daño mecánico. | completo |
| 2 | Lu y otros, 2026 Insects | AnimalesPlantas de té de 30 años en campo, hojas, raíces y suelo; escarabajo barrenador Aeolesthes induta, infestación natural | Qué hicieronCompararon genes, sustancias y bacterias del suelo en plantas sanas e infestadas | Qué vieronJasmonato en raíz: 0,49 ng/g en sanas y 1,35 en infestadas; 145 sustancias alteradas en raíz y 72 en hoja. 5 plantas por grupo, en subparcelas a más de 50 m; un muestreo. | completo |
| 3 | Ramires y otros, 2026 Front. Plant Sci. | AnimalesPlántulas de abeto rojo de 10 semanas, tallo y hojas; proteínas de escarabajo descortezador Ips typographus, sin insecto vivo | Qué hicieronFrotaron el tallo con extracto de proteínas de escarabajo; midieron genes del tallo y compuestos de las hojas | Qué vieron488 genes alterados a las 2 h y 84 a las 48 h, frente a plántulas frotadas sin proteínas; ~30 % compartidos con árboles adultos de bosque. 4 réplicas de 2 plántulas. | completo |
| 4 | Wang y otros, 2026 Plants | AnimalesArroz en invernadero, hojas; chicharrita parda Nilaparvata lugens | Qué hicieronAumentaron o anularon el gen OsJAC1 y midieron insectos, hormonas y sustancias defensivas | Qué vieronOsJAC1 alcanza su máximo 6 h tras la infestación. Con el gen aumentado: más jasmonato que en plantas normales a las 12 h y crías del insecto con menos peso. Sin el gen: crías con más peso. Al menos 15 insectos por genotipo. | completo |
| 5 | Zheng y otros, 2026 J Exp Bot | AnimalesArroz; chicharrita parda Nilaparvata lugens | Qué hicieronEstudiaron plantas con más o sin la proteína reguladora OsWRKY10 y mutantes de OsDIP1 | Qué vieronOsWRKY10 activa genes de síntesis de jasmonato y frena la alimentación y la puesta del insecto; OsDIP1 favorece su degradación. | resumen |
| 6 | Baudon y otros, 2026 Sci. Adv. | AnimalesPlántulas de arabidopsis de 10 a 15 días, raíces laterales; herida con capilar de vidrio, sin insecto | Qué hicieronHirieron una raíz y registraron carga eléctrica, calcio y presión en raíces vecinas | Qué vieronHerida de una célula: despolarización de 49,4 mV (n = 12). Sin MCA1, la señal en la raíz vecina queda en el 38,2 % de la de plantas normales; sin OSCA1, en el 92,1 %. | completo |
| 7 | Xu y otros, 2026 Plant Physiology | AnimalesArroz; chicharrita parda Nilaparvata lugens | Qué hicieronEstudiaron un aminoácido, la β-tirosina, y la vía que lo une al jasmonato | Qué vieronLa β-tirosina aumenta la lignina y dificulta la alimentación del insecto, sin afectar a su supervivencia; una proteína reguladora inducida por jasmonato activa su síntesis. | resumen |
| 8 | Kumari y otros, 2026 Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. | AnimalesArabidopsis, hojas y vasos; herida y una oruga plaga | Qué hicieronAnalizaron mutantes del canal de calcio CNGC13 y del receptor PEPR2 | Qué vieronSin CNGC13, la señal de calcio de la herida llega peor a hojas lejanas, se acumula menos jasmonato en ellas y aumenta la susceptibilidad al insecto. | resumen |
«Completo»: se leyó el artículo entero, publicado en abierto. «Resumen»: el artículo es de pago y solo se leyó su resumen; de esos estudios no se cuenta el resultado, se indica a qué conclusión sirven de apoyo.
Términos
Referencias
- Karrem A, Terry M, Jaba J, Kariyat R. Silverleaf Nightshade ( <scp> <i>Solanum elaeagnifolium</i> </scp> ) Undergoes Guild‐Specific Transcriptomic Reprogramming Against Chewing Versus Piercing Sucking Herbivory. Physiologia Plantarum. 2026-09;178(5). doi:10.1111/ppl.71128 PMID: 42785720
- Lu C, Zhang J, Chen K, Zhang X, Du X, Feng F, et al. Foliar and Root Dynamic Analyses Reveal a Coordinated Defense Regulatory Network Against Aeolesthes induta Infestation in Tea Plants. Insects. 2026-09-01;17(9):911. doi:10.3390/insects17090911 PMID: 42783278
- Ramires M, Netherer S, Schebeck M, Ertl R, Ahmad M, Arc E, et al. Bark beetle (Ips typographus) protein elicitors trigger temporally structured immune responses in Norway spruce (Picea abies) seedlings. Front. Plant Sci. 2026-09-08;17. doi:10.3389/fpls.2026.1911806 PMID: 42774269
- Wang J, Sun N, Zhong R, Tian J, Xue R, Zheng Y, et al. OsJAC1 Positively Regulates Brown Planthopper Resistance in Rice Through Priming of Diterpenoid Biosynthesis and Amplification of Jasmonic Acid Signaling. Plants. 2026-09-17;15(18):2840. doi:10.3390/plants15182840 PMID: 42796871
- Zheng E, Zhou J, Yuan X, Wang S, Shen Y, Liao G, et al. Transcription factor OsWRKY10 drives a jasmonate-mediated defense amplification circuit constrained by Drought-Induced Protein 1 in rice defence against brown planthopper. J Exp Bot. 2026-09-22. doi:10.1093/jxb/erag456 PMID: 42770828
- Baudon A, Brodersen CR, Huang S, Song H, Becker D, Geiger D, et al. MCA1 mechanosensitive channels enable fast communication of wound signals between lateral roots. Sci. Adv. 2026-09-25;12(39). doi:10.1126/sciadv.aef2202 PMID: 42789706
- Xu M, Bai G, He Y, Long J, Li D, Li P, et al. A JA-OsMYB72-OsTAM1 module promotes (R)-β-tyrosine-mediated lignin defense against brown planthopper in rice. Plant Physiology. 2026-10-06. doi:10.1093/plphys/kiag743 PMID: 42836384
- Kumari M, Prajapati R, Pawar M, Sharma B, Orlando Marchesano BM, Yang Y, et al. The Ca <sup>2+</sup> channel CYCLIC NUCLEOTIDE GATED CHANNEL13 regulates vasculature-mediated systemic Ca <sup>2+</sup> and jasmonate signaling on herbivory. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 2026-10-06;123(40). doi:10.1073/pnas.2612869123 PMID: 42809399